导航菜单

速效救心丸通过肥大细胞促进胎鼠宫内发育的作用

李秀富1,2,高登慧2,姚红艳2,欧德渊2

(1.铜仁职业技术学院,贵州 铜仁 554300;2.贵州大学动物科学学院,贵阳 550025)

摘要:为探讨速效救心丸(QAHR)通过肥大细胞及其主要介质促进宫内胎儿生长发育的作用,将140只雌性小鼠随机分正常对照组、速效救心丸250 mg/kg、500 mg/kg和750 mg/kg给药组。当小鼠妊娠至16 d时脱颈椎处死小鼠,对其子宫组织分别进行组胺(HA)含量和一氧化氮合酶(NOS)活力测定,子宫肥大细胞(MC)、肝素阳性细胞显色及微血管密度(MVD)测定。结果表明,500 mg/kg和750 mg/kg的速效救心丸给药组小鼠子宫MC数、肝素阳性细胞数、子宫MVD和NOS活力较对照组显著(P<0.05)升高,而子宫HA含量显著(P<0.05)低于对照组。提示速效救心丸可能通过增加小鼠子宫组织内MC数量及其主要介质的释放,改善血液循环和促进微血管生成,从而促进宫内胎儿的生长发育。

教育期刊网 http://www.jyqkw.com
关键词 :速效救心丸(QAHR);肥大细胞(MC);介质;小鼠

中图分类号:R285 文献标识码:A 文章编号:0439-8114(2015)04-0920-03

DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2015.04.037

收稿日期:2014-06-16

基金项目:贵州省自然科学基金项目(黔科合J字[2012]2146号)

作者简介:李秀富(1980-),男,贵州思南人,讲师,硕士,主要从事畜牧兽医教学和组织胚胎学研究,(电话)15286773536(电子信箱)lxf00000@126.com;通信作者,欧德渊,(电子信箱)oyl1000@sina.com。

胎儿在子宫内的生长和发育是一个复杂的生物学过程。宫内发育迟缓(Intrauterine growth retardation, IUGR)是哺乳动物胚胎、胎儿或其器官在妊娠期间生长和发育受阻的现象,主要受遗传、环境以及母体和胎儿间营养物质供给的影响[1],最终均导致子宫胎盘发育障碍及循环功能障碍,而妊娠期子宫胎盘的血液循环主要靠血管周围的活性介质和增加微血管生成来维持其低张状态[2]。IUGR对产后胎儿的生长发育及其饲料利用效率方面均有永久性的阻碍作用,对机体组成、肉质及其运动能力也存在长期的负面影响,给畜牧生产造成较大的经济损失,也是医学领域尚未能完全解决的一大难题[3]。速效救心丸(Quick-acting heart reliever,QAHR)由川芎和冰片组成。具有行气活血、祛瘀止痛、增加冠脉血流量、缓解心绞痛、舒张血管平滑肌等作用。本试验通过QAHR对孕鼠子宫肥大细胞(Mast cell,MC)及其主要介质影响的研究,揭示QAHR通过MC及其主要介质对宫内胎儿生长发育的作用,旨在为综合防治IUGR提供理论依据。

1 材料与方法

1.1 材料

1.1.1 试验动物 从贵阳医学院实验动物中心购进昆明系[scxk(黔)2002-0001]同批、同饲养条件小白鼠210只,体重(35.0±3.0) g,雌雄比2∶1。

1.1.2 主要仪器 TP1020型自动组织脱水处理机、RM2125型旋转式切片机,德国LEICA;Mias图像采集系统,四川大学计算机系图像图形研究所;930A型荧光分光光度计,上海三科仪器有限公司。

1.1.3 主要试剂 速效救心丸,天津中新药业集团公司第六中药厂,批号:617046;Toluidine Blue 0,Sino-American Biotec,批号:bs1091;一氧化氮合酶(Nitric oxide synthase,NOS)试剂盒,南京建成生物工程研究所,批号:20090703;CD34抗体,武汉博士德生物工程有限公司,批号:20090809;常规试剂等。

1.2 方法

将140只体重(35.0±3.0) g雌性小白鼠随机分为4组,每组35只(每笼2只),对照组饲喂基础日粮,QAHR给药组分为3个剂量组(即在基础日粮中分别按250、500、750 mg/kg的量拌饲QAHR),小鼠均自由采食饮水,饲养室温光条件与环境一致。预饲1周后,按雌雄比例2∶1配种,当晚将雄鼠放进雌鼠笼内,次日早晨检查母鼠,若有阴栓的判定为怀孕第一天。妊娠至第15天时禁食24 h,脱颈椎处死母鼠,用吸水纸吸取多余的水分后分别测每组胎仔数,用电子天平测每个胎仔重、子宫胎盘重,IUGR数(即低于正常胎鼠平均体重10%的胎鼠数);用荧光光度法测子宫组胺(HA)含量;NOS试剂盒测子宫组织NOS活力;Carnoy’s固定,甲苯胺蓝染色(Toluidine blue,TB)显示MC;NBF固定,吖啶橙(Acridine-Orange,AO)显示子宫肝素阳性细胞;CD34试剂盒进行微血管密度(Microvessel density,MVD)显色。

1.3 数据处理

各组试验数据均以平均数±标准误表示,用SPSS13.0软件中One-way ANOVA进行统计分析。

2 结果与分析

2.1 小鼠胚胎生长发育指标测定结果

由表1可见,500 mg/kg和750 mg/kg QAHR组平均胎仔重较对照组显著(P<0.05)增加;子宫胎盘重随拌饲的QAHR剂量升高而增高,且750 mg/kg QAHR组较对照组显著(P<0.05)增加;750 mg/kg QAHR组胎仔数较对照组显著(P<0.05)增加;500 mg/kg和750 mg/kg QAHR组IUGR数较对照组显著(P<0.05)减少。而250 mg/kg QAHR组与对照组相比各项指标差异均不显著。

2.2 小鼠子宫MC和肝素阳性细胞的分布

经TB与AO染色的切片观察,孕小鼠子宫MC及肝素阳性细胞均主要分布于肌层近血管处,外膜中较少,内膜内极少(图1~5);由表2可见,500 mg/kg和750 mg/kg QAHR组小鼠子宫MC及肝素阳性细胞数较对照组均显著(P<0.05)增加,250 mg/kg QAHR组小鼠子宫MC及肝素阳性细胞数与对照组相比差异不显著。

2.3 小鼠子宫HA含量与NOS活力测定

由表3可见,500 mg/kg和750 mg/kg QAHR组小鼠子宫HA含量较对照组显著(P<0.05)降低,而子宫组织NOS活力较对照组显著(P<0.05)升高,250 mg/kg QAHR组小鼠子宫HA含量和NOS活力与对照组相比差异不显著。

2.4 子宫微血管的分布

CD34具有染色强、背景清晰、易计数的特点。阳性细胞呈棕黄色条索状排列,广泛分布于子宫组织的毛细血管内皮细胞,许多含有多层平滑肌成分的厚壁大腔血管内皮细胞同时也着色(图6~8)。由表4可见,500 mg/kg和750 mg/kg QAHR组小鼠子宫MVD较对照组显著(P<0.05)增多,而250 mg/kg QAHR组小鼠子宫MVD与对照组相比差异不显著。

3 小结与讨论

3.1 QAHR对孕鼠子宫MC及其主要介质的影响

子宫内MC的研究是生殖学的重要内容[4],其释放的活性介质HA具有舒张血管平滑肌和松弛子宫平滑肌的作用,HP有改善低氧血症和微循环等作用[5],NO有舒张血管和降低血管阻力的作用,而且还有促血管生成的作用[6]。

本试验中,AO染色显示的小鼠子宫肝素阳性细胞与TB染色显示的MC形态与分布十分相似,主要分布于肌层近血管处,外膜中较少,内膜中极少而不易看见,形态多样,大小不一,胞浆内有大小不等的颗粒。MC和肝素阳性细胞在数量上随QAHR呈剂量依赖性升高,肝素是MC合成和分泌的主要介质[7],NOS是调节内源性NO产生的关键因素[8]。本试验中小鼠子宫、胎盘HA随QAHR剂量的升高而降低,NOS活力随QAHR剂量的升高而升高。且本试验中小鼠胚胎生长发育相关指标随QAHR添加剂量的升高均有升高,IUGR数减少。综合分析认为可能是QAHR促进孕鼠子宫MC调控其主要介质释放共同调节孕鼠子宫微血管生成、改善低氧血症、改善微循环、促进子宫平滑肌舒张和调节胚胎发育的结果[9,10] 。

3.2 QAHR对孕鼠子宫微血管生成的促进作用

妊娠期间,血管发生和血管化是胚胎生长发育的基础[11]。MC可以刺激血管内皮细胞增生,NO能促使血管内皮生长因子等物质产生[9];HA在体内外均有促血管生成的作用;HP能特异性刺激毛细血管内皮细胞迁移和血管构成[11];QAHR对鸡胚尿囊膜血管生成也有明显的促进作用[12]。

本研究采用内皮细胞特异性较高的CD34抗原标记子宫微血管,可见阳性细胞呈棕黄色,广泛分布于子宫组织的毛细血管内皮,许多含有多层平滑肌的血管也有着色,具有染色强、背景清晰、易计数的特点。在数量上,小鼠子宫MVD有随QAHR剂量增加呈依赖性升高的趋势。由此可见,QAHR可能通过调节子宫内MC促血管生成因子的释放和其本身的促血管生成作用双向调节血管生成,使子宫内微血管数目增加,进而促进母仔间的营养供给和加速代谢产物排除,为子宫内胎儿的生长发育提供充足的氧和营养素,这可能是QAHR防治IUGR 的部分机理。

教育期刊网 http://www.jyqkw.com
参考文献:

[1] BEHRMAN R E, KLIEGMAN R, JENSON H B.Nelson Textbook of Pediatrics[M]. 16th edition. United States :W B Saunders Co,2000.477-485.

[2] FOX S B,KHONG T Y.Lack of innervation of human umbilical cord:An immunohistological and histochemical study[J]. Placenta,1990, 11(1): 59-62.

[3] 周根来.新生仔猪小肠发育及胎儿宫内发育迟缓对其的影响[D].南京:南京农业大学,2003.8-54.

[4] 张文学,张新胜,薛德明,等.孕鼠子宫肥大细胞分布、数量和组化性质的动态变化[J].解剖学杂志,2000,23(3):225-227.

[5] 鲁月娥.肝素临床应用的新进展[J].中国医药导报,2005(11):28-29.

[6] ZERVOU S,KLENTZERIS L D,OLD R W.Nitric oxide synthase expression and steroid regulation in the uterus of women with menorrhagia[J]. Mol Hum Reprod,1999,5(11):1048-1054.

[7] 郭俊峰,高登慧,欧德渊.鸡胚发育中免疫器官肝素阳性细胞的观察[J].中国家禽,2011,33(22):25-27.

[8] 胡琅琳.不同频率电针“内关”对心肌缺血模型大鼠相关经穴皮肤血流量与相关分子(NOS/NO/CaM)变化的研究[D].北京:北京中医药大学,2013.

[9] 詹新林.黄芪丹参复方成分对NO合成阻滞模型孕鼠影响的实验研究[D].长沙:湖南中医学院,2002.9-21.

[10] 向 萌,殷莲华.肥大细胞与血管新生[J].国外医学·生理、病理科学与临床分册,2004,24(3):251-253.

[11] 邹冰玉,谢 兰,陈 廉,等.血管内皮生长因子在妊娠高血压综合征患者胎盘和蜕膜组织中的表达[J].四川医学,2004,25(8):868-869.

[12] 李朝武,刘新泳,张 蕊,等.川芎醇对血管内皮细胞增殖与损伤保护作用的研究[J].山东大学学报(医学版),2003,41(4):403-407.

下载文本